ВходОбработка наркозно дыхательной аппаратуры. Современные проблемы науки и образования. Стерилизация наркозно-дыхательной аппаратуры и инструментов
Семестр.
Тема: Основы анестезиологии. Местная и общая анестезия.
Алгоритмы практической деятельности.
НАБОР ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ НОВОКАИНОВОЙ БЛОКАДЫ
Цели: Проведение новокаиновой блокады.
Показания: Различные оперативные вмешательства, с терапевтической целью
Противопоказания: Непереносимость к анестетику, обширные травматические оперативные вмешательства, возраст пациента.
Осложнений: нет
Оснащение: Кожный антисептик, перчатки, стерильный пинцет, маска, шприц 20 гр. ,новокаин, 1%, 0,25%, игла (10-12 см.), Стерильный материал, липкий пластырь.
| № | Обоснование | |
| 1. | Убедитесь в необходимости данной манипуляции (назначение в истории болезни). | |
| 2. | ||
| Профилактика В.Б.И. | ||
| 3. | Инфекционная безопасность | |
| 4. | Профилактика инфицирования. | |
| 5. | Открывают стерильный стол, стерильным пинцетом, стоящим во флаконе с 6% перекисью водорода (рядом со стерильным столом), берут стерильный лоток, пинцеты, ножницы, ватно-марлевые шарики, салфетки. Иглу 10-12 см. | |
| 6. | Готовят все необходимое для манипуляции. Берется флакон новокаина 0,25%, 100 мл, спирт или хлоргексидин, лейкопластырь, стерильные перчатки. |
НАБОР ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ СПИННОМОЗГОВОЙ АНЕСТЕЗИИ,
ЛЮМБАЛЬНОЙ ПУНКЦИИ.
Цели: Проведение люмбальной пункции
Показания: Заболевания, травмы черепа и позвоночника.
Противопоказания: Непереносимость к препаратам новокаина, тяжесть состояния.
Осложнения: Инфицирование оболочек спинного мозга.
Оснащение: лидокаина, тримекаина, бупивакаина, Кожный антисептик, йод, перчатки, стерильный пинцет, маска, шприц 20 гр. ,новокаин, 0,25%, игла (10-12 см.), Стерильный материал, липкий пластырь, стерильный лоток, контейнер для отходов.
| № | Последовательность действий (этапы) | Обоснование |
| 1. | Убедитесь в необходимости данной манипуляции. (назначение в истории болезни). | Определение показаний к манипуляции |
| 2. | Объясните пациенту смысл манипуляции и необходимость ее выполнения. Успокойте его. | Психологическая подготовка пострадавшего |
| 3. | Одевают маску руки моют под проточной водой с мылом, вытираются насухо. | |
| 4. | Обрабатывают руки хирургическим способом, одевают стерильные перчатки. | Инфекционная безопасность |
| 5. | Обработать кожу (70% этиловым спиртом, 1% раствором йодоната) в месте будущей блокады. | Профилактика инфицирования. |
| 6. | Открывается стерильный стол, (стерильным пинцетом, стоящим во флаконе с 6% перекисью водорода, рядом со столом), берется стерильный лоток, куда кладут два пинцета, ножницы, стерильный материал, иглу для люмбальной пункции (10-12 см с мандреном). Одноразовый шприц 10-20 мл. Стерильный стол закрывают. | Соблюдение требований асептики |
| 7. | Готовиться все необходимое для манипуляции (флакон лидокаина, тримекаина, бупивакаина, 10-20 мл, спирт, йод или хлоргексидин, стерильные перчатки, пластырь). | Качественное проведение манипуляции |
УХОД ЗА НАРКОЗНО ДЫХАТЕЛЬНОЙ АППАРАТУРОЙ
Цель: Обработка наркозно-дыхательной аппаратуры
Показания. Дезинфекция наркозного аппарата.
Противопоказания: Аллергическая реакция на хлорсодержащие препараты.
Оснащение: Резиновый фартук. Респиратор (или 8-слойная маска). Очки. Шапочка. Резиновые перчатки, Эмалированная емкость с крышкой. Бутыль из темного стекла с притертой пробкой для раствора состоящего (20 мл 30% пергидроля и 5 г. моющего порошка на 1 л горячей воды). Марлевые тампоны. Раствор 10% формалина или 3% раствор перекиси водорода. Простынь. Дистиллированная вода
| № | Последовательность действий (этапы) | Обоснование |
| 1. | Медсестра разъединяет и отсоединяет отдельные металлические детали аппарата | Строгое последовательное выполнение манипуляции – залог успеха |
| Моет эти детали под струей теплой воды. | Требование гигиены. | |
| 2. | Затем на 15-20 мин погружает в горячий (50º С) раствор, который готовит из расчета 20 мл 30% пергидроля и 5 г. моющего порошка на 1 л горячей воды. | Соблюдение инструкции и норм асептики |
| 3. | По прошествии указанного времени замоченные детали аппарата моют в том же растворе тампоном и прополаскивают в проточной воде. | Соблюдение требований к последовательности проводимой манипуляции. |
| 4. | С целью дезинфекции или стерилизации - резиновые детали, корпус и станину адсорбера, клапана, погружают на 1 час в 10% раствор формалина или 3% раствор перекиси водорода. | Соблюдение требований санэпидрежима. |
| 5. | Затем дважды прополаскивают в дистиллированной воде, протирают стерильной простыней и хранят в медицинском шкафу. | Качественность выполнения манипуляции |
Обеззараживание комnлектующих деталей, отдельных узлов и блоков аппаратов ИН, ИВЛ
Таблица. Экспозиция и концентрация дезинфицирующих растворов при анаэробной инфекции и туберкулезе. Нажмите, чтобы увеличить
Комплектующие детали из резины и пластмасс: эндотрахеальные трубки, трахеотомические канюли, ротоглоточные воздуховоды, лицевые маски, мундштуки-загубники. Присоединителъные элементы: коннекторы, адаптеры, тройники, соединительные втулки, составные части нереверсивного клапана дезинфицурют любых из приведенных ниже дезинфицирующих средств: 3% раствор перекиси водорода (180 мин.), 3% раствор формальдегида (30 мин.), 3% раствор хлорамина (60 мин.), 1% раствор дезоксона (20 мин.) при температуре от 18 до 20 градусов Цельсия. Изделия после обеззараживания отмываются последовательно в двух порциях стерильной воды, затем сушат и хранят в асептических условиях
Дыхательные шланги: малый гофрированный шланг, корпус увлажнителя, сборники конденсата промывают водой, помещают в моющий р-р (0,5 % перекиси водорода с моющим р-ром), затем подогревают до 50 градусов. Далее нужно вымыть детали марлевым тампоном, прополоскать детали струей проточной водой. Поместить в один из дезинфицирующих растворов:
- 1% р-р дезоксона
- 3 % р-р перекиси водорода
- 3 % р-р формальдегида
- 3 % р-р хлорамина
Изделия после обеззараживания отмываются последовательно в двухпорциях стерильной воды, затем тщательно высушивают
Дыхательный мешок (мех) заполняют моющим раствором (0,5 перекиси водорода с моющим раствором), встряхивают (для лучшего промывания), промывнют водой и погружают в емкость в один из дезинфицирующих растворов:
- 3 % р-р перекиси водорода
- 3 % р-ра формальдегида
- 3 % р-р хлорамина
- 1 % р-р дезоксона
Воздуховод циркуляционной системы, клапаны резиркуляции (вдоха и выдоха), предохранительные клапаны кипятят в дистилированной воде или же погружают в дезинфицирующие растворы указанные выше. В аппаратах «Полинаркон-2», «Полинаркон-2П», «Наркон-2», «РД-4» необходимо полностью разбирать воздуховод и клапаны
Изделия после обеззараживания отмываются последовательно в двух порциях стерильной воды, тщательно высушивают стериальнйо простыней
Перед обеззараживанием адсорбера из него удаляют адсорбент, а затем заливают моющим раствором и подогревают
Рамку адсорбера протирают марлевым тампоном, смоченным в моющем растворе
Адсорбер - уплотняющую прокладку погружают в любые из вышеуказанных дезинфирующих средств. Экспозиция также указана выше. Изделия после обеззараживания отмываются последовательно в двух порциях стерильной воды, затем сушат и хранят в асептических условиях
Примечание. Для металлических деталей с никелевым и хромовым покрытиями обеззараживание раствором дезоксона исключается, так как этот раствор вызывает коррозию металлов
1. Очистку аппаратов необходимо проводить как можно раньше после их использования.
2. Провести гигиеническую обработку рук согласно стандарта "гигиена рук".
3. Надеть перчатки.
4. Подготовить рабочее место:
Емкость с дезинфицирующим раствором;
Емкость с дистиллированной водой;
Дезинфицирующее средство;
Перчатки;
Ватно-марлевые тампоны;
Стерильную пеленку.
5. Разобрать аппарат. Съемные части (шланги, влагосборники, увлажнитель, тройники, адаптер, коробки клапанов и другие части в зависимости от марки аппарата) погрузить полностью в контейнер с дезинфицирующим раствором, разрешенных для этих целей в установленном порядке (например, 3% пероксимед на 60 мин.)
Если режим дезинфекции не совмещен с предстерилизационной очисткой, дополнительно проводят предстерилизационную очистку ОСТ 42-21-2-85
6. Дважды с интервалом 15-20 мин. протереть корпус аппарата снаружи салфеткой смоченной дезинфицирующим раствором для этих целей (обладающим моющими свойствами, например 3% пероксимед).
7. Бумажный фильтр снять и погрузить в контейнер для дезинфекции отходов класса "Б".
8. Съемные части аппарата после выдержки экспозиции режима дезинфекции промыть в том же растворе; адаптер, клапан, тройники, влагосборники и другие части с помощью ватно-марлевого тампона, в течении 25-30 сек.
9. Ватно-марлевый тампон сбросить в контейнер для дезинфекции отходов класса "Б".
10. Прополоскать съемные части аппарата под проточной водой, выложить на чистую пеленку и провести азопирамрвый самоконтроль.
11. Съемные части аппарата прополоскать в емкости с дистиллированной водой и выложить на стерильную простынь.
12. Снять использованные перчатки и погрузить их в контейнер с дезинфицирующим раствором.
13. Провести гигиеническую антисептику рук согласно стандарта "гигиена рук". Надеть чистые перчатки.
14. Собрать аппарат, присоединить все продезинфицированные и высушенные съемные части.
15. Во влагосборник залить дезинфицирующий раствор (0,5% раствор хлоргикседина), подключить аппарат на 60 мин при газотоке 2 л/мин.
16. Удалить остатки дезинфицирующего раствора. Продуть аппарат потоком кислорода 8-10 л/мин по полузакрытому контуру в течении 15 мин.
1Одной из сложнейших задач неонатологии - предупреждение инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, в отделениях реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) при выхаживании недоношенных новорожденных с экстремально низкой и очень низкой массой тела. Оказание медицинской помощи данному контингенту пациентов требует высокой ответственности медицинского персонала ОРИТ по соблюдению принципов асептики и антисептики при проведении манипуляций, связанных с нарушением целостности кожных покровов и слизистых оболочек. В статье обсуждаются методики обработки кувезов и наркозно-дыхательной аппаратуры, как многокомпонентного оборудования, содержащего синтетические материалы, требующих деликатных методов обеззараживания, и даются рекомендации по их применению с учетом требований нормативных документов и накопленного практического опыта.
стерилизация
дезинфекция
наркозно-дыхательная аппаратура
недоношенные новорожденные
отделение реанимации и интенсивной терапии
связанные с оказанием медицинской помощи
инфекции
1. Брусина Е.Б. Теоретические, методические и организационные основы эпидемиологического надзора за госпитальными гнойно-септическими инфекциями в хирургии (эпидемиологические, клинические, и микробиологические исследования): Автореф. дисс. док. мед. наук. – Омск, 1996. - 46 с.
2. Брусина Е.Б. Эпидемиология инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи в отделениях реанимации и интенсивной терапии // Главная медицинская сестра. - 2014. - № 2. – С. 49–55.
3. Детские болезни. Учебник. Т. 1. Неонатология / Под ред. Н.Н. Володина, Ю.Г. Мухиной, Ю.Г. Чубаровой. – М., 2011.
4. Методические указания по дезинфекции кувезов для недоношенных детей. Приложение № 7 к приказу МЗ СССР № 440 от 20.04.1983 г. - М., 1983.
5. Неонаталогия. Национальное руководство. Краткое издание. / Под ред. акад. РАМН Н.Н. Володина. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013.
6. Парыгина О.Н. О совершенствовании системы эпидемиологического контроля инфекционной заболеваемости новорожденных в стационарах второго этапа выхаживания / Парыгина О.Н., Обухова Т.М., Турчанинов Д.В. // Современные проблемы науки и образования. - 2011. - № 6. - С. 5.
7. Покровский В.И., Акимкин В.Г., Брико Н.И. и др. Национальная концепция профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, утв. 06.11.2011. – Н.Новгород, 2012. - 84 с.
8. Приказ МЗ СССР № 720 «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойно-хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией» от 31.07.1978 г. - М., 1978.
9. Ракитин А.В. Оценка эффективности и качества дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в системе эпидемиологического надзора за госпитальными гнойно-септическими инфекциями в акушерских стационарах: Автореф. дисс. канд. мед. наук. – Омск, 2000. - 19 с.
10. СанПиН 2.1.3.2630-10 Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность. – М., 2010.
11. СанПиН 2.1.7.2790-10 Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами. – М., 2010.
12. Сестринский уход и интенсивная терапия в неонатологии. Сб. материалов для медицинских сестер отделения новорожденных: Методические указания / Под ред. Пшеничникова В.К. - СПб.: ООО «Береста», 2013. – С. 296.
13. Стасенко В.Л. Научные, методические и организационные основы профилактики внутрибольничных инфекций в стационарах для новорожденных детей (второй этап выхаживания): Автореф. дисс. докт. мед. наук. – Омск, 2004. - 39 с.
14. Шандала М.Г., Алёшкин В.А., Селькова Е.П., Пантелеева Л.Г. и др. Эпидемиологические и дезинфектологические обоснования рационального выбора методов, средств и режимов дезинфекции и стерилизации в лечебно-профилактических учреждениях: Рекомендации для медицинских работников. – М., 2006. - 38 с.
15. Шестопалов Н.В., Пантелеева Л.Г., Соколова Н.Ф., Абрамова И.М., Лукичев С.П. Федеральные клинические рекомендации по выбору химических средств дезинфекции и стерилизации для использования в медицинских организациях. – М., 2015. - 56 с.
В Национальной концепции профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, большое значение придается совершенствованию дезинфекционно-стерилизационных мероприятий в медицинских организациях, в том числе в неонатологии . Прошло более 30 лет с момента выхода приказов МЗ СССР, которыми регламентированы методы и средства обеззараживания кувезов , обеззараживания и стерилизации аппаратов искусственной вентиляции легких . С 1980-х гг. значительно пополнился перечень средства дезинфекции, введены новые методики химической деконтаминации медицинских изделий: дезинфекция высокого уровня, совмещение дезинфекции и предстерилизационной очистки в один этап, широкое использование ультразвуковых установок для повышения качества очистки от биологической и механической нагрузки, для дезинфекции медицинских изделий . Естественно, новые требования и технологии нашли свое применение и в неонатологии. Современные условия требуют новых походов к проведению дезинфекционных мероприятий, что нашло свое отражение в Санитарных правилах .
С переходом России на новые критерии жизнеспособности плода, принятые ВОЗ (вес недоношенного новорожденного от 500 г), резко увеличилось количество недоношенных малышей с экстремально низкой массой тела (ЭНМТ) и очень низкой массой тела (ОНМТ), что потребовало разработки высоких технологий по их выхаживанию, создания перинатальных центров, оснащения отделений реанимации и интенсивной терапии новорожденных (ОРИТН) и патологии новорожденных и недоношенных (ОПНН) перинатального центра для оказания высококвалифицированной специализированной медицинской помощи, а в роддомах - палат интенсивной терапии . Организм даже здорового доношенного новорожденного ребенка проходит период адаптации к внеутробной жизни. У недоношенного ребенка глубоко незрелый организм не готов пережить этот кризис, т.е. не готов к адаптации в условиях внеутробной жизни, и нуждается в поддержании функций. В этот период многое зависит от профессионализма и четкости действий медицинского персонала. Первичная реанимационная помощь может оказываться уже в родильном зале: 5-6% новорожденных нуждаются в санации верхних дыхательных путей и дополнительном снабжении кислородом. Поэтому первоочередной задачей является проведение реанимационных мероприятий, позволяющих обеспечить жизнедеятельность организма. При выполнении вышеуказанных процедур применяются стерильные изделия, преимущественно однократного применения, медицинский персонал проводит процедуры в асептических условиях - подготовленное помещение, стерильные халат, маска, салфетки, простыни, ватно-марлевые изделия, антисептическая обработка рук и использование разовых стерильных перчаток, очков для защиты глаз .
Для проведения инвазивных манипуляций в учреждениях должны быть разработаны стандарты на выполнение каждой процедуры, которые должны персоналом строго выполняться . Все процедуры проводят с соблюдением принципов асептики и антисептики. Изделия однократного применения, в том числе одежда персонала, использованные белье, марлевые изделия, после процедур подвергают дезинфекции как медицинские отходы класса Б , а изделия многократного использования подвергают дезинфекции по противовирусному режиму, эффективному при парентеральных вирусных гепатитах (В, С) .
По данным Е.Б. Брусиной , частота инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП), в ОРИТ достигает 230 случаев на 1000 новорожденных. Инфекции вызваны условно-патогенной и патогенной микрофлорой в период пребывания в ОРИТ. Высокий риск присоединения ИСМП в ОРИТН определяется особенностями лечебно-диагностического процесса, связанными с искусственной вентиляцией легких (ИВЛ), массивной инфузионной терапией, сосудистыми эксплантантами и др. По мнению автора, факторами риска для новорожденных являются: полиорганная недостаточность, иммунодефицит, экстремально низкая масса тела, респираторный дистресс-синдром и др. Основные типы инфекции в ОРИТ определяют: пневмония (27,0 на 1000 дней вентиляции), инфекция кровотока (12,5 случаев на 1000 дней внутривенной катетеризации) и инфекция мочевыводящих путей (8,9 на 1000 дней мочевой катетеризации). Поэтому считаем необходимым обсудить особенности обработки кувезов и наркозно-дыхательных аппаратов.
Материалы и методы
На основании данных нормативной документации и литературы, а также материалов собственных исследований проведены анализ и обобщение сведений о методиках, режимах дезинфекции и стерилизации наркозно-дыхательной аппаратуры, кувезов в ОРИТ при оказании медицинской помощи недоношенным новорожденным с экстремально низкой и очень низкой массой тела.
Результаты и их обсуждение
Дезинфекция кувезов. Обработку кувезов и приспособлений к ним проводят в отдельном специально выделенном асептическом помещении в отсутствие детей, после перевода новорожденного или не реже 1 раза в 7 дней. При обработке кувезов следует учитывать рекомендации производителя (документацию по эксплуатации кувеза, прилагаемую к конкретной модели) . Однако отечественные и зарубежные ученые и действующие санитарные правила рекомендуют смену кувезов проводить через каждые 3 суток пребывания ребенка . Поверхности кувеза и его приспособления после пребывания ребенка в нем подвергаются дезинфекции по типу заключительной. Рекомендуется дезинфекцию кувезов проводить в отдельном хорошо проветриваемом помещении, оснащенном стационарными бактерицидными ультрафиолетовыми облучателями (УФО) и передвижной УФ-установкой. Перед обеззараживанием медперсонал надевает чистый халат, маску и стерильные резиновые печатки .
Перед обработкой кувеза его необходимо выключить, опорожнить водяной бачок увлажнителя, в случаях, предусмотренных инструкцией по эксплуатации кувеза, поменять фильтры отверстия кабины, через которое в кувез поступает воздух. Дезинфекцию кувезов проводят дезинфицирующими средствами, в инструкциях по применению которых есть рекомендации по обеззараживанию кувезов .
В соответствии с современными нормативными документами дезинфекцию внутренних поверхностей кувезов проводят способом протирания, различных приспособлений - погружением в растворы дезинфицирующих средств по режимам (концентрация раствора, время дезинфекционной выдержки), рекомендованным для профилактики и борьбы с бактериальными, вирусными и грибковыми инфекциями, выбирая из них наиболее жесткий для данного средства - более высокие концентрации рабочих растворов и более длительное время обеззараживания . При обработке используют стерильную ветошь. Ветошь смачивают дезинфицирующим раствором и тщательно дважды через 15 мин протирают внутренние поверхности кувеза, матрасик, а затем наружные поверхности. Крышку кувеза закрывают и открывают через 1 ч.
После дезинфекции кувеза остатки дезинфицирующего раствора следует удалить многократным (не менее 2 раз) смыванием (протиранием) стерильными салфетками или стерильной пеленкой, обильно смоченными стерильной водой (100-150 мл/м²). После каждого смывания необходимо поверхности вытирать насухо. По окончании влажной обработки кувезы следует проветрить в течение времени, рекомендованного инструкцией к используемому средству.
Внутренние поверхности кувеза могут подвергаться ультрафиолетовому облучению (при устойчивости материалов кувеза к действию УФО). Включают бактерицидную лампу, располагая ее на расстоянии 0,5-1 м так, чтобы пучок света перпендикулярно падал в камеру открытого кувеза. Проветривание и облучение продолжаются 30-60 мин. Закончив обработку, кувез закрывают, включают аппарат и выдерживают в течение 2-5 ч. Обработанные кувезы хранят в асептических условиях. Перед тем как поместить ребенка, увлажняющую систему кувеза заливают стерильной дистиллированной (очищенной) водой.
Для дезинфекционной обработки применяют средства, позволяющие совмещать дезинфекцию с очисткой в одном этапе по наиболее эффективному режиму по вышеизложенным критериям . При туберкулезе новорожденного выбирают дезсредства, эффективность которых тестирована на Mycobacterium terrae, о чем содержится информация в инструкции на средство .
Используемые средства должны пройти разрешительную систему и иметь соответствующую документацию. При выборе дезсредства следует в целях исключения их вредного воздействия на медицинское изделие руководствоваться рекомендациями производителей этих изделий о совместимости конкретных дезсредств с материалами, использованными при изготовлении этих изделий. Современными являются средства на основе третичных алкиламинов, перекиси водорода и их композиционные препараты, обладающие антимикробными и моющими свойствами, которые позволяют совмещать дезинфекцию с очисткой в единый процесс. Препараты на основе перекиси водорода не оставляют на синтетических материалах кувезов следов. Эти две группы эффективных средств позволяют проводить их ротацию для предупреждения развития резистентности бактерий к действию химических дезинфекционных средств .
Для дезинфекции кувезов не допускается применение хлорактивныхсредств, а также средств, содержащих в своем составе альдегиды, фенол и его производные . Не рекомендуются средства на основе гуанидинов, четвертичных аммониевых соединений (ЧАС), спиртов и в составе различных сочетаний из-за способности проявлять фиксирующее действие и образовывать пленки .
Рабочий раствор дезсредства применяют в концентрации и с экспозицией в соответствии с режимом по методическим рекомендациям или инструкции на используемое средство. Норма расхода средства - 100-150 мл рабочего раствора на 1 м² обрабатываемой поверхности.
Приспособления (резервуар увлажнителя, металлический волногаситель, воздухозаборные трубки, шланги, узел подготовки кислорода) полностью погружают в емкость с рабочим раствором дезсредства на время, указанное в инструкции на средство. После окончания дезинфекции все приспособления промывают путем двукратного погружения в стерильную воду по 3-5 мин каждое, прокачав стерильную воду через трубки и шланги. Приспособления высушивают с помощью стерильных тканевых салфеток.
Необходимо строго соблюдать последовательность всех этапов обеззараживания и последующей обработки кувеза, точно выполнять сроки экспозиции и проветривания.
При низкой эффективности проводимых дезинфекционных мероприятий по изложенным методикам разрешенными средствами (при высеве условно-патогенной микрофлоры после обработки) обеззараживание проводят с применением 6%-ного раствора перекиси водорода и экспозиции 60 мин.
Дезинфекцию наружных поверхностей кувезовс целью профилактики ИСМП осуществляют ежедневно одновременно с проведением текущих уборок по режиму, обеспечивающему гибель грамотрицательных и грамположительных бактерий (по режиму бактериальных инфекций) с последующим удалением средства стерильными тканевыми салфетками (ветошью), обильно смоченными стерильной питьевой водой, затем насухо вытирают стерильной пеленкой (ветошью).
Обработка анестезиологического инструмента. После окончания оказания помощи пациенту, не позволяя высохнуть биологическим загрязнениям, весь (ларингоскоп, роторасширитель, языкодержатель, мандрен для эндотрахеальных трубок, пинцет и др.) инструмент, соприкасающийся со слизистыми, подвергают предварительной очистке в слабом растворе моюще-дезинфицирующего средства с использованием салфеток для удаления видимых загрязнений, которые обеззараживают как отходы класса Б , затем погружают в рабочий раствор дезсредства, позволяющего совмещать дезинфекцию с предстерилизационной очисткой в один этап. Отмывают от дезсредства проточной водопроводной водой, затем дистиллированной в соответствии с инструкцией на средство. Соблюдают алгоритм такой процедуры. После этого такой инструмент подвергают дезинфекции высокого уровня или стерилизации в средствах, разрешенных для этих целей .
Режимы обработки наркозно-дыхательной аппаратуры. Дезинфекцию наркозно-дыхательной аппаратуры и приспособлений к ней осуществляют в соответствии с рекомендациями, изложенными в «Инструкции по очистке (мойке) и обеззараживанию аппаратов ингаляционного наркоза и искусственной вентиляции легких» рабочими растворами средств, официально разрешенных для этих целей .
В исследованиях было показано, что компоненты аппаратов ИВЛ значительно контаминируются условно-патогенной микрофлорой. В структуре микрофлоры, выделенной с аппаратов ИВЛ, преобладали бактерии рода Pseudomonas, на долю которых приходилось 62,9%. Более половины всех выделенных возбудителей составили синегнойная палочка - 55,7%, бактерии рода Acinetobacter (9,1%), Staphylococcus aureus (10%) и Enterobacter (8,6%).
Наибольшая обсемененность отмечалась в увлажнителе - 89,4 случаев, а сборнике конденсата - 84,1 случаев на 1000 исследований проб. Коннекторы, адаптеры, тройники были обсеменены в 51,7 случаев на 1000. Интенсивно загрязняются клапаны вдоха (46,4%) и выдоха (70,9%).
Для обработки деталей, комплектующих аппараты (масок, шлангов, ротоглоточных воздуховодов, дыхательных мешков), в соматических стационарах с целью профилактики гнойно-септических инфекций, ВИЧ-инфекции, гепатитов В (ВГВ) и С (ВГС), цитомегаловирусной инфекции (ЦМВ) и иного рекомендуется режим обеззараживания по гепатиту В, эффективный как при бактериальных (исключая туберкулез), так и вирусных инфекциях, передающихся артифициальным, контактным путями . При оказании помощи в противотуберкулезных учреждениях пациенту с туберкулезом применяется соответствующий режим дезинфекции при туберкулезе дезсредствами, тестированными на Mycobacteria terrae .
Использование режима обработки комплектующих деталей наркозно-дыхательной аппаратуры моюще-дезинфицирующими растворами значительно сократит общее время обработки, объединив очистку и дезинфекцию в один процесс. Указанные режимы в равной степени эффективны в отношении возбудителей гнойно-септических, вирусных инфекций (ВГВ и ВГС), кандидозов, туберкулеза, за исключением заболеваний, вызванных спорообразующими бактериями (столбняк, газовая, анаэробная инфекция).
Алгоритм обработки:
1) разборка узлов, снятие шлангов, присоединительных элементов, крышек клапанных коробок, отсоединение и опорожнение сборников конденсата и т.п.;
2) предварительная очистка для удаления биологических и других загрязнений путем протирания салфетками с использованием слабого раствора дезинфицирующего средства, разрешенного для этих целей, в режиме предстерилизационной очистки; промывание внутренних каналов этим же раствором либо промывание в емкости с водопроводной водой сразу же после окончания работы. Салфетки, промывные воды обеззараживают по режиму медотходов класса Б ;
3) дезинфекция по режиму ВГВ - при оказании помощи новорожденному; по режиму туберкулеза - при оказании помощи больному туберкулезом с применением разрешенных средств. Разрешено применять средства, позволяющие совмещать дезинфекцию с очисткой в едином процессе;
4) отмывание водопроводной водой от остатков дезсредства;
5) окончательная очистка изделий (с соблюдением алгоритма и методики предстерилизационной очистки по ОСТ 42-21-2-85) проводится с использованием средств, разрешенных только для этих целей.
6) ополаскивание водопроводной водой;
7) ополаскивание в дистиллированной (очищенной) воде в двух емкостях;
8) сушка деталей в стерильной простыне, салфетками и хранение в асептических условиях;
9) стерилизация комплектующих деталей химическим методом;
10) стерилизации подвергают аппараты ИН, ИВЛ в собранном виде растворами формальдегида в этиловом спирте по методике, изложенной в приказе (приложение 4 п. 4) или иным способом, официально разрешенным.
Для обеззараживания комплектующих деталей ИВЛ-аппаратуры при инфекционных заболеваниях, вызванных спорообразующими бактериями (столбняк, анаэробная инфекция, Clostridium difficile), применяют растворы средств, обладающих стерилизующим эффектом, в концентрации и экспозиции, как при стерилизации изделий . При этом соблюдается вышеуказанный алгоритм обработки. Средства, режимы и методы обеззараживания приведены в инструкциях на дезсредства, официально разрешенные для применения с этой целью.
Средства предварительной очистки, средства и методы обеззараживания смывных вод приводятся как медотходов класса Б .
Алгоритм обработки интубационных трубок, катетеров для санации трахеобронхиального дерева, зондов включает несколько этапов.
1. Предварительная очистка от биологических (крови, слизи) и других загрязнений с применением низких концентраций разрешенных растворов дезинфектантов (в режиме ПСО) или воды с использованием салфеток; путем пропускания через каналы, полости дезраствора (шприцем) и полного погружения в раствор с заполнением каналов. Смывную жидкость, салфетки подвергают обеззараживанию по режиму ВГВ (медотходы класса Б) или туберкулеза и кандидозов (медотходы класса В) .
2. Дезинфекция изделий по режиму вирусного гепатита В или туберкулеза, кандидозов путем погружения в раствор дезинфицирующего средства, разрешенного для этих целей.
3. Отмывание водопроводной водой от остатков дезсредств.
4. Основная очистка - предстерилизационная очистка изделий. Режимы, методы приведены в инструкциях, методических указаниях на средства, разрешенные для этих целей. Строго соблюдают концентрацию средства и время выдержки.
5. Отмывание водопроводной водой, затем водой, очищенной от остатков моющего средства, в течение времени согласно инструкции.
6. Сушка изделий.
7. Стерилизация химическим методом в асептических условиях путем полного погружения изделий и заполнения каналов растворами средств, официально разрешенных для этих целей. Санитарными правилами разрешены: кислородсодержащие, альдегидсодержащие соединения, анолит АНК, нейтральный анолит. Емкости для стерилянта и стерильной воды для отмывания стерилизуют паровым методом при давлении 2,0±0,2 кгс/см², температуре 132±2ºС в течение 20+2 мин или при давлении 2,1±0,1 кгс/см², температуре 134±1ºС в течение 5+1 мин . Возможно применение газового, плазменного метода стерилизации при наличии соответствующих аппаратов . В настоящее время переходят на изделия разового пользования, поставляемые стерильными медицинской промышленностью.
8. Отмывание от раствора стерилянта в стерильной жидкости в асептических условиях. Методика и время даны в инструкции, методических указаниях на каждое средство.
9. Высушивание поверхностей изделий в стерильных салфетках, простынях, внутренних каналов стерильным воздухом с применением воздушного насоса или стерильного шприца. Упаковка в стерильные простыни, хранение в стерильном биксе с фильтром не более 72 ч. Маски, изготовленные из термоустойчивого материала, стерилизуют паровым методом по режиму при 121±1ºС (давление 1,1+0,1 кгс/см 2) в течение 20 мин или при температуре 134±1ºС и экспозиции 5+1 мин.
Обработка аппаратов искусственной вентиляции легких весьма трудоемка, поскольку применяются разнородные материалы. В настоящее время в неонатологии используется принцип замены разовых блоков контуров и комплектующих деталей из резины после каждого пациента на аналогичные стерильные изделия промышленного производства.
В 1980-1990-х гг. при преобладании хлорамина и перекиси водорода мы в натурных опытах использовали для обработки внешней среды, медицинских изделий, аппаратов ИВЛ при контаминации синегнойной палочкой двойное обеззараживание, сначала 1-2%-ным раствором борной кислоты - расщепление и удаление слизистой оболочки, затем основную дезинфекцию - 1%-ным раствором хлорамина .
При инфицировании Klebsiella pneumonia в опытах с той же целью использовали тоже метод двойного обеззараживания: сначала обрабатывали 0,25%-ным раствором уксусной кислоты, затем 1%-ным раствором хлорамина. Анализ наших данных свидетельствует, что соотношение естественной устойчивости к хлорамину по минимальной ингибирующей концентрации у клебсиеллы пневмонии, синегнойной палочки, эпидермального стафилококка к патогенному стафилококку, фекальному стрептококку, кишечной палочке имели следующие значения: 3:4,7:1,8:1. Эти факты послужили основой для дифференцированного проведения дезинфекционных мероприятий от вышеуказанных микробных факторов при осложнении эпидемиологической ситуации в стационаре .
Выводы
Таким образом, методика очистки и обеззараживания кувезов сохраняется, но предложено использовать современные дезсредства, а режимы использования средств дезинфекции ужесточаются.
В отношении использования аппаратов искусственной вентиляции легких предпочтительнее переход на разовые стерильные блоки контуров и комплектующие детали.
Библиографическая ссылка
Ракитин А.В., Стасенко В.Л., Обухова Т.М., Блох А.И. ОСОБЕННОСТИ ДЕЗИНФЕКЦИИ И СТЕРИЛИЗАЦИИ КУВЕЗОВ, НАРКОЗНО-ДЫХАТЕЛЬНОЙ АППАРАТУРЫ В ОТДЕЛЕНИЯХ РЕАНИМАЦИИ И ИНТЕНСИВНОЙ ТЕРАПИИ ДЛЯ НОВОРОЖДЕННЫХ НА СОВРЕМЕННОМ ЭТАПЕ // Современные проблемы науки и образования. – 2015. – № 6.;URL: http://сайт/ru/article/view?id=23753 (дата обращения: 19.07.2019).
Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
Во время наркоза и искусственной вентиляции легких вместе с выдыхаемым воздухом в аппарат поступает микрофлора из легких и полости рта больного. Больше всего микробов скапливается в шлангах вдоха и выдоха, в сборнике конденсата, который является «рассадником» микробов, в патрубке выдоха и в увлажнителе. Чаще всего обнаруживаются кишечная и синегнойная палочки, протей, различная кокковая флора, в том числе гемолитический и негемолитический стафилококк.
Заражение по схеме- больной- аппарат- больной считается одной из главных причин послеоперационных пневмоний, и поэтому стерилизацию наркозной дыхательной аппаратуры надо расценивать как важный элемент борьбы с госпитальной инфекцией. Следует придавать особое значение механической очистке узлов этих аппаратов, причем ее надо проводить как можно раньше после окончания наркоза или ИВЛ. Отмывание просвета шлангов до высыхания содержимого снижает бактериальную загрязненность аппаратуры, а оставление ее грязной способствует размножению микробов в мокроте, осевшей внутри аппарата. Чем позднее приступают к промыванию шлангов других узлов аппаратуры, тем труднее добиться хорошей механической очистки их. При обеззараживании наркозной дыхательной аппаратуры возникают две проблемы: выбор метода стерилизации и сохранение стерильности аппаратов до их использования. Вторая проблема решается просто: простерилизованный аппарат накрывают стерильной простыней или пластиком. Трубки для интубации кипятят перед использованием или хранят стерильными в асептическом растворе: 6% раствор перекиси водорода, 96% спирте. Наркозные и дыхательные аппараты разбирают на основные узлы, которые стерилизуют после тщательного промывания.
Обеззараживание аппаратов для ингаляционного наркоза и искусственной вентиляции легких слагаются из 7 этапов:
1. предварительное промывание в течение 5 мин. под струей холодной, затем теплой и горячей воды как можно раньше после использования аппарата.
2. замачивание, т.е. погружение полностью с заполнением всех полостей обрабатываемых деталей в бачок, раковину или ванну, наполненные моющим раствором (температура 50 градусов) на 15-20 мин.
3. мытье каждой детали при помощи ерша или ватно- марлевого тампона в течение 30-45 мин.
4. прополаскивание. Вначале каждую деталь прополаскивают проточной водой: при использовании моющего раствора в течение 3-5 мин., затем ополаскивают в дистиллированной воде 30 секунд.
5. сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 85 градусов до исчезновения влаги. При отсутствии сушильного шкафа просушивание проводится стерильным полотенцем.
6. холодная стерилизация узлов, не подлежащих термической обработке. Погружение в один из антисептических растворов: 3-6 % раствор перекиси водорода (при температуре 40-50градусов) на 60 мин. металлические детали стерилизуют кипячением или автоклавированием.
7. отмывание деталей стерильной водой и просушивание в асептических условиях (завернутыми в стерильное полотенце) в сушильном шкафу.
Следует отдавать предпочтение холодной стерилизации 3 или 6% раствором перекиси водорода, увеличивая при сильном загрязнении аппарата экспозицию до 3 часов.
Стерилизация аппаратов искусственного кровообращения и искусственной почки .
Эффективность стерилизации аппаратов искусственного кровообращения (АИК) и искусственной почки во многом зависит от качества предстерилизационной очистки, которая должна начаться тотчас после окончания работы аппарата. Особое внимание уделяется тщательному отмыванию от крови всех трубок и узлов аппаратов, соприкасавшихся с кровью. Эта процедура проводится по принципам, описанным выше. Полихлорвиниловые и другие трубки лучше всего использовать однократно.
Полноценное обеспечение асептики обеспечивается в централизованных стерилизационных отделениях и должно выполняться высококвалифицированными людьми. ЦСО разделяются на 2 зоны: «грязную», или правильнее, приемно- подготовительную, зону и чистую. В первую зону поступают биксы с нестерильным материалом. Персонал ЦСО осматривает их, убеждаясь в их прочности и пригодности, регистрирует, а затем погружает в автоклав и проводит стерилизацию. По окончании цикла отворяют двери автоклава, ведущие в чистую зону, и вынимают простерилизованные биксы. При переходе из приемной зоны в чистую проводится смена халата и мытье рук, одевается стерильная маска. Готовый к работе стерильный материал укладывают на стеллажи в чистой зоне. В чистой зоне проводится контроль качества стерильности.